摇床有哪些用途
摇床的用途是用于通过摇动来混合或搅动管子、烧瓶中的物质。它主要用于化学和生物学领域，摇床包含一个振荡板，用于放置烧瓶、烧杯或试管。虽然最近磁力搅拌器取代了振动器，但在处理大体积物质或需要同时搅拌时，它仍然是首选设备。摇床的类型：1. 平台摇床。平台振动台有一个水平摆动的台板，待搅拌的液体放在放在桌子上方的烧杯、广口瓶或锥形烧瓶中，有时也放在嵌套在盘子孔中的试管或小瓶中。平台振动器还可以与其他系统结合使用，例如用于小型系统的旋转混合器，并且设计为在实验室中使用开源科学设备制造。2. 轨道摇床。轨道振动器具有低速（25-500 rpm）的圆形振动运动，它适用于培养微生物、洗涤印迹和一般混合。它的一些特点是它不会产生振动，与其他种类的振动器相比，它产生的热量低，这使其成为培养微生物的理想选择。此外，由于其低温和振动，它可以通过将其放置在培养箱中进行修改以创建培养箱摇床。3. 培养箱摇床。培养箱摇床（或热摇床）可以被认为是培养箱和摇床的混合体，它能够在保持最佳条件的同时摇晃，以培养微生物或 DNA 复制。该设备非常有用，因为为了使细胞生长，它需要需要摇动的氧气和营养物质，以便它们可以均匀地分布在培养物周围。
摇床的作用有哪些
摇床的作用为搅拌溶液。摇床是一种选分精确性很高的细粒、微细粒物料的分选设备，在选分低品位钨、锡矿石时，富集比可高达300倍；选别效率一般较其它细粒重选设备为高。主要用于选别钨、锡、钽、铌、铬和其它有色、稀有金属以及贵金属矿石，也可用来选别铁、锰矿石和煤。摇床的作用机理是原料送入给矿槽内，同时加水调配成浓度约25%到30%的矿浆，自动流到床面上。矿粒群在床条沟内因受水流冲洗和摇动作用产生松散、分层。分层后的上下层矿粒受到不同大小的水流动压力和床面摩擦力作用，而沿不同方向运动。作用作用是汉语词汇，意思是某种对象在某个时间或无某个空间或无的某个过程中，作为手段、工具，最终达成的效果。对事物产生影响，外界事物作用于人的感觉器官，从而产生印象。对人或事物产生的影响、效果，消极作用，带头作用。所有使结构产生力或者位移变形的因素。作用的名言有，我现在才懂得，年青人总是偏好推崇历史上出类拔萃的英雄，而忽视平民百姓在历史进程中的推动作用。多少世纪以来，人民的作用被遗忘了，他们不可磨灭的丰功伟绩被歪曲了。
脱色摇床的操作方法
操作步骤：1将仪器平稳放在工作台上。2插上电源，打开电源开关。3将所需震荡物质放入仪器震荡平台上。4从小到大调节所需的震荡频率。5如需定时设定，设定在适合状态。6工作完毕、关闭电源并拔出电源，清洁台面。注意事项：1需震荡的物质盖好瓶盖，放置倒到仪器震荡平面上。2震荡前排除可能会碰到的物体。3清洁：每月定时用酒精擦洗仪器。【摘要】
脱色摇床的操作方法【提问】
操作步骤：1将仪器平稳放在工作台上。2插上电源，打开电源开关。3将所需震荡物质放入仪器震荡平台上。4从小到大调节所需的震荡频率。5如需定时设定，设定在适合状态。6工作完毕、关闭电源并拔出电源，清洁台面。注意事项：1需震荡的物质盖好瓶盖，放置倒到仪器震荡平面上。2震荡前排除可能会碰到的物体。3清洁：每月定时用酒精擦洗仪器。【回答】
脱色摇床做什么用的
在细胞的培养中少不了需要用到脱色摇床，它可以可以上下摇动，整体做旋转晃动，使得细胞得到均匀的脱色或者染色！脱色摇床是指台式小型，用于蛋白电泳的脱色过程，一般只有很低的转速，是开发性的，体积相对较小脱色摇床是一种工作方式为摇摆式的摇床，在同类产品中技术较先进，具有质量可靠，运行平稳，噪音小，无级调速等特点，是生化、生物工程、教学、微生物及医学等行业研究和生产中的优选设备。脱色摇床主要是指跑电泳时染色、脱色，还有细胞培养等需要的，其主要就是较小，而且上面的台面一般是平的，做水平回旋（现在也有一些可以上下摇动，整体做旋转晃动，这样摇晃的均匀度和一致性比较好）。采用永磁直流电机作为动力，通过先进的电子调速电路，能够保持较为平稳的运动速度，同时具有使用寿命长，维护简单，操作方便的优点。
求助：感受态细胞在反复冻融后还能不能用
方法一：细菌转化的方法多以Mendel和Higa（1970）的发现为基础，其基本方法是用冰预冷的CaCl2或多种2价阳离子等处理细菌，使之进入感受态得以转化。用CaCl2制备新鲜或冷冻的大肠杆菌感受态细胞，常用于成批制备感受态细菌。本法适用于大多数大肠杆菌菌株，且迅速、重复性好。操作过程简述如下。1．从37℃培养16～20h的新鲜平板中挑取一个单菌落（如大肠杆菌DH52），或1ml新鲜的16～20h过夜培养物，转到一个含有100mlLB培养基的1L或500ml烧瓶中。于37℃剧烈振摇培养约2～3h（旋转摇床200～300r/min），每隔20～30min测量OD600值≈0.4。2．在无菌条件下将细菌转移到一个，用冰预冷的50ml聚丙烯离心管中，在冰上放置10～20min。3．于4℃用SorvallGS2转头（或与其离心管相配的转头）以4000r/min离心10min，以回收细胞。4．倒数培养液，将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。5．以10ml用冰预冷的0.1mMCaCl2重悬每份沉淀，放于冰上。6．于4℃用SorvallGS3转头（或与其相应的转头）以4000r/min离心10min，以回收细胞。7．倒出培养液，将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。8．每50ml初始培养物用2ml冰预冷的0.1MCaCl2重悬每份沉定，此时，可以迅速将细胞分装成小份，液氮中冰冻，-70℃贮存备用。9．用冷却的无菌吸头从每种感受态细胞悬液中各取200μl转移到无菌的微量离心管中，每管加DNA或连接反应混合物（体积≤10μl，DNA≤50ng），轻轻旋转以混匀内容物，在冰中放置30min。10．将离心管放到预加温到40℃的循环水浴中的试管架上，放置90s～2min，不要摇动试管。11．快速将管转移到冰浴中，使细胞冷却1～2min。12．每离心管加800μlSOC培养基，用水浴将培养基加温到37℃，然后将管转移到37℃摇床上，温育45min使细菌复苏，并且表达质粒编码的抗生素抗性标记基因。13．将适当体积（每个90mm平板可达200μl）已转化的感受态细胞转移到含200mmol/lMgSO4和相应抗生素的SOB培养基上。14．将平板置于室温至液体被吸收。15．倒置平皿，于37℃培养，12～16h后可出现菌落。方法二：CASsuperOne-StepCompetentCellPrepsKit采用一种简单便捷的方法处理大肠杆菌，使其成为感受态细胞，便于质粒DNA的转化，可满足一般实验的要求。与CaCl2法相比具有多种优点：使用方便，只需一步即可完成感受态细胞的制备；转化效率略高于CaCl2法，一般可达106-108cfu/μg，满足一般实验需要；感受态细胞制成后即可保存于-70℃,无须加入甘油，并且经长期保存活力无明显下降。准备工作：1．从液氮或低温冰箱中取出的大肠杆菌冻存菌，在LB平板上划线，37度过夜至长出单菌落。挑形态饱满的单菌落2个，分别接种5mlLB培养基中，37℃，250rpm，过夜培养。2．次日从5mlLB培养物吸取200μl转入50mlLB培养基中（250ml锥形瓶），37℃，250rpm培养2小时，此时OD600约0.4—0.5。感受态细胞的制备：3．吸取1ml菌液到1.5ml离心管里，5000rpm离心5分钟，弃去上清。4．加入100μl预冷的SolutionA，悬浮菌体，冰浴30分钟。5．此时感受态细胞已经制成可立即使用或-70℃保存。细胞转化：6．在感受态细胞中加入100pg-10ngDNA，混匀，冰浴30分钟，然后42℃1分钟热击，再次冰浴2分钟。加入0.9mlLB培养基，20μlSolutionB，37℃，振荡培养1小时。7．取适当菌液（100-200μl）涂布相应抗性的平板。8．过夜培养约16个小时，数菌落数，计算转化率。补充说明：1．所用器具一定要清洁；2．操作步骤2中培养基的装量也是很重要的，建议装量不要高于此值：500ml锥形瓶装100ml培养基，250ml锥形瓶装50ml培养基；3．在收获菌体前半小时还可以在培养基中加入20mM的MgCl2，效果会更好一些；4．为保证细胞处于对数生长期，培养后的菌体的OD值不要高于0.6；5．制备感受态细胞时所有操作尽量保证在冰上操作；6．细胞转化操作步骤6中也可以不必进行热击，冰浴后直接加入新鲜LB，简化操作步骤，但转化效率低于热击方法，适用于对转化率要求不高的实验。方法三：1、取1%大肠杆菌E.coli接种于含2mlLB培养基的试管中，37℃振荡培养过夜2、取0.1ml过夜培养物转种于含10mlLB培养基的三角瓶中，37℃振荡培养3h至OD600=0.3ml离心管中，冰浴10min。4、在4℃下以4000rpm离心5min，去上清液5、把菌体悬浮于15m1冰冷的0.1MCaCl2溶液中，置冰上30min6、然后再在4℃下以4000rpm离心10min，去上清液7、将菌体悬浮于0.1mlCaCl2溶液中，冰浴放置4-12hr备用。方法四：（1）将1ml过夜培养的细菌（如DH52、TG1、TM101）接种于100ml2×YT培养于500ml烧瓶。于37℃刷烈振荡，通常≥200rpm培养的细菌密度约OD550=0.2～0.5(5×107cells/ml),需2～4h。（2）将培养物放于冰上致冷10min，于4℃离心细菌培养物，10000rpm离心10min。（3）弃除上清，将细菌悬浮于原始培养体积的一半（约50ml）的50mMCaCl2和10mmTris·HCl（pH8.0）无菌冷冻液体中。（4）将细菌悬浮放在冰上约5min，然后将悬浮物于4℃10000/rpm离心10min。（5）弃上清，悬浮细菌于原始培养体积的1/15的50mMCaCl和10mMTris·HCl（pH8.0）无菌冷冻中。此时的细胞是感受态细胞，即可用于转化。200μl分装于无菌的1.5ml微量离心管中，贮存于-80℃冰箱中。方法五：TSB法（也是本人热衷的方法）1.药品制备1MMg2+(1MMgSO4和1MMgCl2等体积混合)，用0.22um滤膜超滤除菌。TSB液（30mL/80mL菌液）（现配现用）：PEG33503gTryptone0.3gYeastextract0.15gNaCl0.3g2.步骤：（1）活化菌株（2）挑单菌落培养于5mL的液笨培养基中（3）取液体培养物50uL于80mL的液体培养基中进行扩大培养（4）370C培养3－4小时，OD600在0.4－0.6（5）离心，去上清（6）加入20mLTSB，重悬（7）离心，去上清（8）加入10mLTSB，再加入15－20%的甘油，分装保存注，整个操作过程均应在冰上进行。所用药品均需灭菌。转化程序（1）取出200μl感受态细胞慢慢使其溶化，并立即放于冰上，加入DNA或连接反应混合物，DNA量通常≤50mg。用手指弹打试管10次，使之混匀，然后放在冰上40～45min。（2）将管放于42℃水浴中2min。（3）然后每管直接加入1.0ml2×YT培养基，倒置混匀，并于37℃培养8～12h，干浴或水浴，不需振摇。此期间使细菌生长并开始表达抗菌素。（4）每200μl转化混合物分别于6个2×YT琼脂培养板上补充相应抗生素，并含有X-gal（20mg/ml）、IPTG（200mg/ml）。
感受态细胞用前离心了一下 会破坏细胞吗
细菌转化的方法多以Mendel和Higa（1970）的发现为基础，其基本方法是用冰预冷的CaCl2或多种2价阳离子等处理细菌，使之进入感受态得以转化。
用CaCl2制备新鲜或冷冻的大肠杆菌感受态细胞，常用于成批制备感受态细菌。本法适用于大多数大肠杆菌菌株，且迅速、重复性好。操作过程简述如下。
1．从37℃培养16～20h的新鲜平板中挑取一个单菌落（如大肠杆菌DH52），或1ml新鲜的16～20h过夜培养物，转到一个含有100mlLB培养基的1L或500ml烧瓶中。于37℃剧烈振摇培养约2～3h（旋转摇床200～300r/min），每隔20～30min测量OD600值≈0.4。 2．在无菌条件下将细菌转移到一个，用冰预冷的50ml聚丙烯离心管中，在冰上放置10～20min。
3．于4℃用SorvallGS2转头（或与其离心管相配的转头）以4000r/min离心10min，以回收细胞。
4．倒数培养液，将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。 5．以10ml用冰预冷的0.1mMCaCl2重悬每份沉淀，放于冰上。
6．于4℃用SorvallGS3转头（或与其相应的转头）以4000r/min离心10min，以回收细胞。
7．倒出培养液，将管倒置1min以使最后残留的痕量培养液流尽。
8．每50ml初始培养物用2ml冰预冷的0.1M CaCl2重悬每份沉定，此时，可以迅速将细胞分装成小份，液氮中冰冻，-70℃贮存备用。
9．用冷却的无菌吸头从每种感受态细胞悬液中各取200μl转移到无菌的微量离心管中，每管加DNA或连接反应混合物（体积≤10μl，DNA≤50ng），轻轻旋转以混匀内容物，在冰中放置30min。
10．将离心管放到预加温到40℃的循环水浴中的试管架上，放置90s～2min，不要摇动试管。
11．快速将管转移到冰浴中，使细胞冷却1～2min。 12．每离心管加800μlSOC培养基，用水浴将培养基加温到37℃，然后将管转移到37℃摇床上，温育45min使细菌复苏，并且表达质粒编码的抗生素抗性标记基因。 13．将适当体积（每个90mm平板可达200μl）已转化的感受态细胞转移到含200mmol/l MgSO4和相应抗生素的SOB培养基上。 14．将平板置于室温至液体被吸收。
15．倒置平皿，于37℃培养，12～16h后可出现菌落。
北京理工大学生物专业怎么样
教育部的学科评估排名，很权威，你看一下吧： 学科 学校 排名 年份应用经济学 北京理工大学 28 2009 教育学 北京理工大学 25 2009 数学 北京理工大学 23 2007 物理学 北京理工大学 34 2007 化学 北京理工大学 32 2007 力学 北京理工大学 12 2007 机械工程 北京理工大学 7 2007 光学工程 北京理工大学 5 2007 仪器科学与技术 北京理工大学 10 2007 材料科学与工程 北京理工大学 22 2007 光学工程 北京理工大学 7 2007 动力工程及工程热物理 北京理工大学 14 2007 电子科学与技术 北京理工大学 13 2007 信息与通讯工程 北京理工大学 5 2007 控制科学与工程 北京理工大学 10 2007 计算机科学与技术 北京理工大学 19 2007 化学工程与技术 北京理工大学 12 2007 交通运输与工程 北京理工大学 15 2009 航空宇航科学与技术 北京理工大学 6 2009 兵器科学与技术 北京理工大学 1 2009 环境科学与工程 北京理工大学 31 2009 生物医学工程 北京理工大学 19 2009 材料科学与工程 北京理工大学 24 2007 工商管理 北京理工大学 32 2007
